Журнал лабораторные животные для научных исследований. Лабораторные животные

В диагностической работе бактериологических лаборато­рий часто приходится прибегать к заражению так называемых лабо­раторных, или опытных, животных. Чаще всего в повседневной практике применяют для этой цели мелких, наиболее дешевых, животных: белых мышей и крыс, морских свинок, кроликов, а из птиц-голубей и кур. Реже используют собак и кошек, еще реже - различные виды сель­скохозяйственных животных. Цель биологических методов исследования заключается в определении патогенности или степени вирулентности иссле­дуемого материала, выделении из материала чистых культур микробов, отделении патогенных микроорганизмов из смеси с сапрофитными видами и т. д. Широкое применение находят лабораторные животные и в серологической практике: морские свинки - для получения комплемента, кролики (овцы, телята) - при изготовлении различных агглютинирующих сывороток, гемолизина, эритроцитов и т. п. Для изготовления специальных питатель­ных сред от животных получают кровь, сыворотку, различные органы, ткани и т. д. Кроме того, лабораторные животные широко используются при определении качеств биологических и химиотерапевтических препаратов, а также научно-экспериментальной работе. Лабораторные животные служат так­же для диагностики некоторых инфекционных заболеваний, моделирования экспериментальных острых и хронических ин­фекционных процессов, установления вирулентности и токсигенности изучаемых штаммов микробов, определения актив­ности приготовленных вакцин и исследования их на безвред­ность.

Бактериологические лаборатории для повседневной работы обычно разводят лабораторных животных в специально организованных для этой цели питомниках. Это дает возможность всегда получать в достаточном количестве проверенный и безупречного качества подопытный материал. Если животные не разводятся, а только содержатся в лаборатории, то помещение для них носит название – виварий. Новые партии животных закупаются в питомниках. Условия содержания и кормления в данных подразделения практически аналогичны, поэтому в ниже приведенном материале не будет дифференциации между указанными структурами лаборатории.

Краткие сведения о содержании, разведении, кормлении и заболеваниях лабораторных животных

Содержание животных в питомниках должно по возможности соответствовать условиям существования их в природе. Это положение особенно относится к диким, родившимся на воле животным и птицам (дикие голуби, воробьи, домашние серые мыши и крысы). В небла­гоприятных для них условиях содержания и кормления эти животные быстро погибают в неволе (особенно воробьи и серые мыши). Обязательным условием успешной работы питомника является строгое соблюдение всех ветеринарно-санитарных, зоотехнических и зоогигиенических правил. Последние предусматривают содержание животных в просторных, светлых, сухих и чистых клетках, в хорошо вентилируемых, с нормальной температу­рой помещениях, рациональное и полноценное кормление и проведение про­филактических мероприятий в целях предупреждения различных заболе­ваний. Громадное значение для питомника имеет хороший состав произво­дителей (самцов и самок).

Питомник (виварий) должен иметь несколько отделений для содержания различных видов животных (кролики, морские свинки, мыши и т. д.). В структуру вивария входят:

отделение для карантинирования и адаптации вновь поступивших животных;

экспериментально-биологическая клиника для содер­жания животных, находящихся в опыте;

изоляторы для подозрительных на инфекционные заболевания и заведомо больных животных, уничтожение которых по условиям эксперимента нежелательно;

экспериментальное помещение (или манипуляционная), в котором осуществляются взвешивание, термометрия, заражение, вакцинация животных, взятие у них крови и не­которые другие процедуры.

Оборудование экспериментального помещения определяется в каждом конкретном случае задачами и условиями проводимых научных исследований.

Карантинное отделение, отделение для подопытных и изо­лятор для инфицированных животных размещаются в поме­щениях, строго изолированных одно от другого и от всех остальных помещений вивария.

Кроме основных перечисленных выше структурных еди­ниц, в составе вивария должны находиться:

а) кормокух­ня из двух смежных помещений для переработки и изго­товления кормов с самостоятельными выходами в коридор из каждого помещения, кладовая со специально оборудован­ными ларями (металлическими или обитыми внутри жестью) и холодильниками для хранения запаса кормов,

б) дезинфек­ционно-моечное отделение из 2 комнат, объединенных пере­ходным автоклавом или сухожаровой камерой.

Работа дезинфекционно-моечного отделения определяется состоянием материала, поступающего на обработку. Инфи­цированный материал, например клетки, подстилки, кор­мушки, вначале дезинфицируют, а затем подвергают механи­ческой чистке и мойке. Материал, не представляющий опас­ности для заражения, вначале подлежит механической очист­ке, а затем (при необходимости) стерилизации.

Моечное помещение в правильно организованном вива­рии имеет мусоропровод для удаления нечистот и грузоподъ­емник для доставки в виварий материала и оборудования.

Рядом с дезинфекционно-моечным отделением размеща­ются склад чистого (запасного) инвентаря с клетками, поил­ками, кормушками и т. п., бытовые помещения и санитарный блок (душевая и туалет) для обслуживающего персонала.

В соответствии с существующими санитарными правила­ми, виварий размещается в отдельно расположенном здании или на верхнем этаже лабораторного корпуса. При размеще­нии вивария в лабораторном корпусе он должен быть полно­стью изолирован от всех других помещений.

Помещение для содержания лабораторных животных должно быть теплым, светлым и сухим с центральным отоплением, естественным и искусственным освещением, прину­дительной приточно-вытяжной вентиляцией, подводкой горя­чей и холодной воды.

Полы в виварии делают из водонепроницаемого материа­ла, без плинтусов, с уклоном к отверстиям или желобам, присоединенным к канализации. Стенки покрывают глазу­рованной плиткой, потолки и двери окрашивают масляной краской.

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - различные виды животных, специально разводимые в условиях лабораторий или питомников для экспериментальной или производственной практики. Л. ж. используют в целях диагностики болезней, моделирования различных физиол, и патол, состояний, изучения леч.-проф, препаратов, химических и физических факторов, производства биологических препаратов - диагностических сывороток, вакцин, культур тканей и др.

К лабораторным относятся животные различных систематических групп: простейшие, черви, членистоногие, иглокожие, амфибии, птицы, млекопитающие. Однако чаще всего Л. ж. подразделяют на беспозвоночных и позвоночных.

Позвоночные лабораторные животные

Использование позвоночных животных человеком с познавательной целью началось, по-видимому, в период развития скотоводства. В последующем на животных стали изучать строение и функции различных органов живых организмов. В частности, известны наблюдения древнегреческого естествоиспытателя Диогена (5 в. до н. э.), который, вскрывая трупы животных, установил разные функции предсердий. Позднее анатомию и физиологию изучали на животных Аристотель, К. Гален, У. Гарвей и др. Первоначально эксперименты проводились на домашних животных. В 15 в. стали известны белые мыши, крысы и морские свинки. Однако понятие «лабораторные животные» сложилось к концу 19 в.

Всего в мед.-биол, исследованиях используют до 250 видов животных. Одни виды постоянно разводят в лабораториях и питомниках для научных исследований (белые мыши, белые крысы, морские свинки, кролики, хомяки, кошки, собаки, обезьяны, мини-свиньи и др.). Другие - периодически отлавливают для эксперимента (полевки, песчанки, суслики, хорьки, сурки, броненосцы, лемминги, амфибии, рыбы и др.). Имеется группа лаб. птиц (куры, голуби, канарейки, перепелки и др.). Часть мед. экспериментов проводят на с.-х. животных (овцы, свиньи, телята и др.). От общего числа Л. ж. на долю мышей приходится ок. 70 %, крыс - 15%, морских свинок - 9%, птиц - 3%, кроликов - 2% и прочих - 1 %.

Интерес исследователей к грызунам обусловлен в основном тем, что многие из них имеют малые размеры тела, высокую плодовитость и короткий период жизни; за несколько месяцев жизни грызуна можно проследить в организме процессы, которые у человека протекают годами. Средняя продолжительность жизни белых мышей 1,5 -2 года, крыс 2-2,5 года, хомяков 2-5 лет, морских свинок 6-8 лет, кроликов 4-9 лет.

При разведении Л. ж. проводят контроль по генетическим, экологическим, морфологическим признакам, а также по состоянию здоровья.

Генетически Л. ж. подразделяются на нелинейных (гетерозиготных) и линейных (гомозиготных). Нелинейных животных разводят на основе случайных скрещиваний и в силу этого они обладают высокой степенью гетерозиготности. Нарастание инбридинга (см.) у этой группы Л. ж. допускается не более 1 % на поколение.

В научных учреждениях, где проводятся исследования на Л. ж., должны быть научно-вспомогательные подразделения: виварий (см.) и экспериментально-биологическая клиника. В виварии содержатся и частично разводятся отдельные виды животных с последующей передачей их для экспериментального исследования. В экспериментально-биологической клинике лишь содержатся животные, на которых проводятся исследования. Виварии и экспериментально-биологические клиники размещаются в отдельном здании (комплексе зданий). Для земноводных животных и рыб, используемых в экспериментах, оборудуются соответствующие помещения.

Для удовлетворения постоянно возрастающего спроса на Л. ж. разных видов, линий и категорий возникла самостоятельная отрасль хозяйства - лабораторное животноводство с соответствующими научными и производственными базами. Организована соответствующая подготовка рабочих кадров. == Беспозвоночные лабораторные животные == Помимо позвоночных животных, в лабораториях находят применение также и многие беспозвоночные: простейшие, гельминты, членистоногие (насекомые, клещи) и др. Цели и методы использования их в качестве Л. ж. весьма разнообразны. Незаменимыми объектами для разнообразных лаб. исследований издавна служат простейшие (тип Protozoa). Быстрота их размножения, малые размеры, сравнительная простота и удобство содержания в условиях лаборатории делают простейших самыми дешевыми экспериментальными моделями (см. Простейшие).

Разработаны методы замораживания и длительного хранения некоторых видов простейших (трипаносом, лейшманий, токсоплазм и др.) в жидком азоте. Этот метод позволяет создавать криобанки штаммов простейших, что удобно при использовании их в качестве Л. ж.

Способность многих простейших размножаться бесполым путем является предпосылкой получения чистых линий простейших организмов - клонов, которые служат незаменимым объектом для генетических, иммунологических и других исследований.

При постановке экспериментов с простейшими следует учитывать не только их вид, штамм или изолят, но нередко и принадлежность к определенной генетической линии. Большое значение при лаб. содержании имеет знание жизненного цикла развития простейшего и отдельных стадий этого цикла (см. Жизненный цикл).

При работе с простейшими значительное влияние оказывают биотические и абиотические факторы окружающей среды.

Крупные амебы (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa и др.) используют при цитогенетических и других исследованиях, в частности при анализе наследственной изменчивости, возникновения и частоты мутаций. В микрургических опытах получены ядерно-цитоплазматические гибриды - гетерокарионы, на которых изучают явления трансплантационной несовместимости, эпигенетической изменчивости и т. д. На этих объектах проводят разнообразные наблюдения по воздействию ионизирующего и ультрафиолетового излучения, хим. мутагенеза.

Инфузории представляют собой классические объекты и для цитогенетических исследований, включая генетический анализ при изучении некоторых проблем изменчивости и наследственности. Инфузории служат удобными объектами при токсикологических исследованиях, а также при изучении биол, эффекта действия ультрафиолетовых лучей, проникающей радиации и других факторов. При этом учитываются изменения скорости и характера движения, пульсации сократительных вакуолей, ядерного аппарата, нарушения темпов деления и т. д. В последние годы некоторые виды инфузорий нашли широкое применение в экспериментах по молекулярной биологии, в частности в генной инженерии. Для содержания инфузорий in vitro разработаны разнообразные по составу среды - от самых простых в виде настоев трав и листьев до сложных синтетических с заранее определенным хим. составом.

Необходимым условием использования в эксперименте членистоногих является проверка исходной природной популяции (родоначальника лаб. культуры) на чистоту линии - отсутствие естественной зараженности возбудителями болезней, поскольку кровососущие членистоногие имеют определяющее значение в качестве переносчиков и хранителей возбудителей многих трансмиссивных инфекций (риккетсиозов, арбовирусных инфекций, лейшманиозов, филяриатозов, малярий и др.). Для определения степени участия какого-либо вида членистоногих в переносе возбудителей инфекций или его истинной роли в эпидемиологии и эпизоотологии необходимо проведение экспериментальных исследований с кровососущими членистоногими и возбудителями болезней.

Аргасовых (Argasidae) и иксодовых (Ixodidae) клещей используют для длительного сохранения возбудителей спирохетозов, риккетсиозов, арбовирусных инфекций и др.

Клещей, комаров, москитов, мух и других членистоногих используют в экспериментах по испытанию эффективности инсектицидов, акарицидов и репеллентов, а также для разработки биол, методов борьбы с переносчиками возбудителей болезней человека и животных и вредителями сельского хозяйства.

Для экспериментального изучения как переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней человека (энцефалитов, геморрагических лихорадок, риккетсиозов и др.), а так-же при испытании эффективности действия акарицидов и разработке специфических методов биол, борьбы используют иксодовых клещей (родов Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Иксодовые клещи легко культивируются в лаб. условиях. Для создания лаб. культуры иксодовых клещей собирают с с.-х. животных (уже напившихся кровью) или с растительности в природных стациях (голодных). Сытых клещей помещают в специально смонтированные увлажненные пробирки для яйцекладки. Голодных клещей кормят на Л. ж. под матерчатыми колпаками, которые приклеивают на спину животному-прокормителю (свинки, кролики, мыши, хомяки, а также овцы и крупный рогатый скот). При правильном уходе клещи одной линии культивируются в лаборатории годами.

Удобной лаб. моделью являются аргасовые клещи (родов Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Их используют для экспериментального изучения отношений клещей с возбудителями (спирохеты, вирусы, риккетсии), а также для длительного (многолетнего) сохранения возбудителей болезней в активном состоянии. Аргасовых клещей при культивировании кормят или на Л. ж., или кровью животных через мембрану, приготовляемую из кожи мыши или цыпленка. Разработан способ кормления аргасовых клещей на курином эмбрионе путем подсадки их в воздушную камеру яйца. Клещи Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes и др. культивируются в лабораториях уже многие десятилетия.

В качестве Л. ж. используют также гамазовых клещей (Gamasoidea). Среди них особенно удобны для содержания в условиях лаборатории клещи Ornithonyssus bacoti (крысиный клещ), Dermanyssus gallinae (куриный клещ), Allodermanyssus sanguineus (мышиный клещ). Гамазовых клещей используют для моделирования инф. процесса при риккетсиозах, клещевом энцефалите, туляремии, геморрагических лихорадках. В лаборатории устраивают так наз. завод - искусственное гнездо, в к-рое помещают клещей и Л. ж. (мыши, куры и др.) для их кормления. По мере надобности клещей отбирают из завода и в процессе эксперимента и наблюдения содержат в специальных увлажненных камерах.

Для экспериментальных работ в различных лабораториях разводят кровососущих комаров (Culicidae) разных родов (Aedes, Anopheles, Culex). В ряде случаев удобно пользоваться комарами рода Culex pipiens molestus, которых легко разводить в условиях лаборатории; оплодотворенные самки в благоприятных условиях не впадают в диапаузу и могут откладывать яйца без предварительного питания кровью. Вышедшие из яиц личинки развиваются в воде, богатой органическими веществами.

Из комаров рода Aedes наиболее легко разводить комаров вида Aedes aegypti, являющихся переносчиками вирусов желтой лихорадки и других заболеваний человека, а также плазмодий птиц и др. Их можно содержать в сравнительно небольших садках; самок комаров кормят кровью кроликов или других животных. Отложенные самками Aedes яйца можно длительное время хранить в сухом состоянии; для выведения личинок их помещают в сосуд с водой. Кормом для личинок служит рисовая пудра, порошок из дафний, яичного желтка и др. Вода в сосуде с личинками должна быть чистой и не загрязняться кормом. Сосуды, в которых образовались куколки, помещают в марлевые садки для выплода комаров.

Для самых разнообразных экспериментальных исследований, в частности для изучения передачи возбудителей чумы, риккетсиозов и других бактериальных заболеваний людей и животных, изучения действия различных инсектицидов, репеллентов и т. п., используют выведенные в условиях лаборатории культуры блох (Aphaniptera). Наиболее удобными для культивирования в условиях лаборатории являются блохи крыс - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus и др. B лаборатории их культивируют в специальных заводах - стеклянных банках, в которые подсаживают животных-прокормителей; в качестве Л. ж. применяют также вшей - переносчиков патогенных спирохет и риккетсий.

С целью разработки научных основ разведения и обоснованного выбора на конкретное исследование видов животных в СССР, Англии, США, Франции, ФРГ, Японии и других странах организованы научные центры по сравнительной биологии Л. ж. В СССР таким центром является Научно-исследовательская лаборатория экспериментально-биологических моделей АМН СССР. Координация работы в данной области осуществляется Международным комитетом по лабораторным животным (ПК Л А), с к-рым сотрудничает более 40 стран, в т. ч. СССР. Ежегодно проводятся научные конференции по разным вопросам биологии Л. ж. и биол, моделирования. По этим вопросам за рубежом издается более 30 периодических изданий. Организованы международные и регионарные центры: Международный справочный центр В ОЗ/М АИР по обеспечению животными со спонтанным развитием опухолей (Нидерланды, Амстердам, Институт рака), Международный справочный центр ФАО/ВОЗ по микоплазмам животных (Дания, г. Орхус, мед. ф-т ун-та). Регионарный справочный центр по вирусам обезьян (США, штат Техас, отдел микробиологии и инф. болезней). Справочные центры имеются при ИКЛА: по гистосовместимости мышей (ПНР), крыс (ФРГ и США), морских свинок (США), собак (ФРГ), по вирусам грызунов (ЧССР, Англия, ФРГ, Япония), по безволосым мышам (Дания), по возбудителям малярии птиц (Канада) и др.

В публикациях результатов исследований, полученных на Л. ж., по рекомендации ВОЗ, требуется указывать их вид, линию, возраст, пол, источник приобретения, условия содержания и кормления.

Из дополнительных материалов

Броненосцы (дополнение к одноименной статье, опубликованной в 12-м томе) - млекопитающие семейства Dasypodidae Bonaparte, 1838 из отряда неполнозубых - Edentata.

В семействе броненосцев 9 родов (21 вид). Броненосцы (син. армадиллы) - древнейшие из живущих млекопитающих, распространены в Южной и Центральной Америке, на юге США. Они ведут ночной образ жизни, живут в норах. Название «броненосцы» связано с наличием на дорсальной поверхности тела панциря, состоящего из отдельных костных пластинок, покрытых роговым слоем (так наз. кожный скелет, не встречающийся у других млекопитающих). Длина туловища броненосцев различных видов колеблется от 12 до 100 см, вес до 55 кг.

Броненосцы используются в медицине и биологии как лабораторные животные, особенно часто - девятипоясный броненосец - Dasy-pus novemcinctus Linnaeus, 1758 (рис. 1). Длина тела взрослого девятипоясного броненосца 40-55 см, вес 3--7 кг; панцирь состоит из грудного и тазового щитков, разделенных 9 подвижными поясами. К особенностям биологии девятипоясных броненосцев относится пониженная температура тела (32-35°), большая длительность задержки имплантации бластоциста - до 4,5 мес. (общая продолжительность беременности ок. 9 мес), воспроизводство четырех монозиготных детенышей, способность переносить длительное отсутствие экзогенного кислорода, сниженные реакции клеточного иммунитета при выраженных гуморальных иммунных реакциях; продолжительность жизни - до 15 лет.

У броненосцев рода Dasypus из одной оплодотворенной яйцеклетки развивается несколько эмбрионов (истинная полиэмбриония), что делает их уникальной естественной моделью для изучения механизмов появления близнецов, а также многих вопросов наследственности и изменчивости. Монозиготные близнецы броненосцев являются объектом для исследований в области трансплантации, а также для иммунологических, токсикол, и тератол. исследований. Фармакокинетика лекарственных средств в организме броненосцев весьма близка к таковой у человека. Напр., установлено, что талидомид вызывает уродства плода броненосцев, что не наблюдалось у других лаб. животных.

Броненосцы легко адаптируются к неволе. Содержать их лучше всего в небольших (2-4 м2) вольерах с конурой для гнезда и ящиком для песка. В качестве подстилочного материала обычно используют обрезки бумаги или мох. В природе они питаются в основном насекомыми, червями, растительная пища составляет менее 10% рациона. В виварии в их рацион включают мясной фарш, яйца, молоко, овощи, фрукты. Броненосцы не агрессивны, поэтому уход и экспериментальная работа с ними не представляют трудностей. В неволе девятипоясные броненосцы не размножаются (нек-рые другие виды, напр, щетинистые броненосцы, размножаются).

Библиография: Башенина Н. В. Руководство по содержанию и разведению новых в лабораторной практике видов мелких грызунов, М., 1975, библиогр.; 3 а-паднюк И. П., Западнюк В. И. и 3 а х а р и я Е. А. Лабораторные животные, Киев, 1974, библиогр.; Лабораторные методы исследования патогенных простейших, сост. Д. Н. Засухин и др., М., 1957; Лейн-Петтер У. Обеспечение научных исследований лабораторными животными, пер. с англ., М., 1964, библиогр.; Медведев H. Н. Линейные мыши, Л., 1964, библиогр.: Саркисов Д. С. и P e м e з o в П. И. Воспроизведение болезней человека в эксперименте, М., 1960, библиогр.; The coccidia, ed. by D. М. Hammond а. P. L. Long, p. 482, Baltimore - L., 1973; Flynn R. Parasites of laboratory animals, Ames, 19 73; Handbook of laboratory animal science, ed. by E. С. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e с k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G. u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Соколов В. Е. Систематика млекопитающих, с. 362, М., 1973; В e n i г s с h k e K. Why armadillos? в кн.: Animal models for biomedical research, p. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Attempts to establish the armadillo (Dasypus novemcinctus Linn) as a model for the study of leprosy, Int. J. Leprosy, v. 39, p. 693, 1971; Merit t D. A. Edentate diets, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23, p. 540, 1973; Peppier R. D. Reproductive parameters in the nine-banded armadillo, Anat. Rec., v. 193, p. 649, 1979; S t o r r s E. E. The nine-banded armadillo, a model for biomedical research, в кн.: The laboratory animal in drug testing. ed. by A. Spiegel, p. 31, Jena, 1973.

В. А. Душкин; Д. H. Засухин, Л. М. Гордеева; A. А. Ющенко.

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ

лаборато́рные живо́тные , животные, специально выращиваемые для проведения на них медицинских, ветеринарных и биологических исследований. К традиционным Л. ж. относятся белые мыши, белые крысы, различные виды хомяков, морские свинки, кролики, кошки, собаки; к нетрадиционным — хлопковые крысы, полёвки, песчанки, хорьки, опоссумы, броненосцы, обезьяны, мини-свиньи, мини-ослы, сумчатые животные, рыбы, амфибии и др. Имеется группа лабораторных птиц (куры, голуби, перепёлки и др.). Кроме Л. ж. , в экспериментах используются домашние животные, чаще овцы и свиньи. Продуцентами иммунных и диагностических сывороток являются лошади, ослы, бараны и кролики. Находят применение в эксперименте и многие беспозвоночные ( , например дрозофила), а также простейшие.

Л. ж. контролируются по генетическим, экологическим, морфологическим показателям и по состоянию здоровья. Разводят их в специальных питомниках или в вивариях при научных учреждениях. Используемые в эксперименте нелинейные Л. ж. должны обладать высокой степенью гетерозиготности. Чем меньше закрытая популяция разводимых нелинейных животных, тем выше степень нарастания среди них инбридинга. Для исследований всё шире применяют гомозиготных (инбредных, линейных) животных, выводимых на основе тесного инбридинга (рис. 1). Известно около 670 линий мышей, 162 линии крыс, 16 линий морских свинок, 66 линий хомяков, 4 линии песчанок и 7 линий цыплят. Каждая линия имеет свои особенности в наборе генов, чувствительности к различным антигенам и стрессовым факторам. Линейные животные систематически контролируются на гомозиготность. При разведении Л. ж. получают у мышей 5 помётов в год, в среднем по 7 мышат в каждом помёте, соответственно у крыс — 5 и 7, у морских свинок — 3 и 5, у кроликов — 4 и 6. Помещения для Л. ж. (виварии) должны быть высокогигиеничными, просторными, с 10-кратным обменом воздуха в 1 ч и влажностью воздуха 50—65%. На 1 м 2 площади размещают 65 взрослых или 240 молодых мышей, 20—100 крыс, 30—40 хомяков, 15—18 морских свинок, 3—4 кролика. В одной клетке допускается содержать не более 15 мышей, 10 крыс, по 5 хомяков и морских свинок, 1 кролика. Не менее 50% площади вивария отводится под подсобные помещения. Во избежание обмена инфекционными агентами не допускается содержание разных видов Л. ж. в одной комнате или клетке. Мышей, крыс, морских свинок и хомяков содержат преимущественно в пластмассовых конусообразных ванночках с сетчатой крышкой; кроликов, собак, обезьян и птиц — в металлических клетках. Ванночки и клетки размещают на стеллажах в 1—6 ярусов (рис. 2), оборудуют автоматическими поилками и бункерными кормушками, перед использованием тщательно моют и дезинфицируют физическими или химическими средствами. Ванночки мышей и крыс еженедельно заменяют чистыми. Удаление из них подстилки и мойку производят в специальном помещении, оборудованном соответствующими приспособлениями или моющими машинами. Кормят Л. ж. натуральными кормами или брикетированными концентратами по разработанным нормам суточной потребности. Брикетированный корм задают в кормушки на несколько суток. Обслуживает Л. ж. обученный персонал, прошедший медицинское обследование.

Л. ж. свойственны многие инфекционные болезни: сальмонеллёзы, листериоз, стафилококкозы, оспа, вирусная диарея, лимфоцитарный хориоменингит, кокцидиозы, гельминтозы, микозы, клещевые поражения и др. Встречаются латентное носительство (особенно у крыс) патогенных бактерий и вирусов, скрытые формы инфекционных болезней мало изученной этиологии. Некоторые инфекции Л. ж. являются зооантропонозами. Профилактика болезней Л. ж. основана на строгом соблюдении санитарно-гигиенических правил, максимальном обеззараживании окружающей среды (помещений, воздуха, оборудования, кормов, подстилки и т. п.). В некоторых странах организовано производство Л. ж. без специфических патогенных факторов, так называемых СПФ-животных (см. ). Возрастающая потребность в Л. ж. обусловила зарождение науки о Л. ж. , которая включает в себя генетику, экологию, морфологию, физиологию, патологию и другие разделы, а также специальное лабораторное животноводство. Во многих странах (США, Великобритании, ФРГ, Франции, СССР и др.) существуют соответствующие научные центры, координация работы которых осуществляется Международным комитетом по науке о Л. ж. (YCLAS).

Литература:
Башенина Н. В., Руководство по содержанию и разведению новых в лабораторной практике видов мелких грызунов. М., 1975;
Санитарные правила по устройству, оборудованию и содержанию экспериментально-биологических клиник (вивариев), М., 1973.

Ветеринарный энциклопедический словарь. - М.: "Советская Энциклопедия" . Главный редактор В.П. Шишков . 1981 .

Смотреть что такое "ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ" в других словарях:

Лабораторные животные - см. Животные лабораторные. (Источник: «Словарь терминов микробиологии») … Словарь микробиологии

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ, животные, служащие в лабораториях различного типа для,научшэ практических целей. Л. ж. лгогут быть такие, к рые легко добываются, хорошо содержатся или разводятся в лабораторной обстановке и кроме того пригодны по своим… … Большая медицинская энциклопедия

Лабораторные животные - животные, используемые в научном эксперименте или опыте, биологическом тестировании, учебном процессе, а также в производстве биологических препаратов... Источник: МОДЕЛЬНЫЙ ЗАКОН ОБ ОБРАЩЕНИИ С ЖИВОТНЫМИ (Вместе с ПОТЕНЦИАЛЬНО ОПАСНЫМИ ПОРОДАМИ… … Официальная терминология

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - используются с науч. целью в биологии, медицине, ветеринарии, с. х ве. В зависимости от задач науч. эксперимента подбирают Л. ж., наиб, подходящих для данных целей. При этом учитываются не только биол. особенности вида, обеспечивающие простоту и… …

Лабораторные животные - экспериментальные, или подопытные, животные, используемые в лабораториях для научных и практических целей. Л. ж. должны быть здоровы, обладать некоторыми специфическими особенностями (например, восприимчивостью к исследуемым инфекциям,… … Большая советская энциклопедия

Животные модельные - * жывёлы мадэльныя * аnimal model лабораторные животные, которых используют для проведения научных исследований, особенно медицинских, с целью изучения наследственных болезней человека. В н. вр. в экспериментальной медицине применяют около 250… … Генетика. Энциклопедический словарь

ЖИВОТНЫЕ В ЭКСПЕРИМЕНТАХ - использование животных в биологических, физиологических и медицинских исследованиях, в тестах на токсичность различных продуктов и препаратов, в различных образовательных программах и т.п. Животных при этом либо забивают, а затем исследуют их… … Энциклопедия Кольера

Животные лабораторные - (экспериментальные) разнородные виды животных, используемые в лабораториях для решения научных и прикладных целей. В настоящее время в экспериментальной медицине применяют около 250 видов позвоночных и беспозвоночных животных. Традиционными для… … Словарь микробиологии

ЖИВОТНЫЕ - (Animalia), царство живых организмов, одно из самых крупных подразделений в системе органич. мира. Возникли, вероятно, ок. 1 1,5 млрд. лет назад в море в форме клеток, напоминающих микроскопич. бесхлорофильных амебоидных жгутиконоспев. Наземные Ж … Биологический энциклопедический словарь

Животные в космосе - Эксперименты, которые должны были определить, возможен ли полет человека в космос, начались в СССР и США в 1940 1950 х годах. Первым этапом биокосмических исследований стали многократные полеты собак, обезьян и других животных в ракетах на высоте … Энциклопедия ньюсмейкеров

Книги

• Лабораторные животные. Учебное пособие , Стекольников Анатолий Александрович , Щербаков Григорий Гаврилович , Яшин Анатолий Викторович , В пособии приведен материал по важным отраслям ветеринарии и зоотехнии, касающийся содержания, кормления и болезней лабораторных животных. Изложен по общепринятой методике, соответствующей… Категория: Ветеринария Серия: Учебники для вузов. Специальная литература Издатель:

В связи с тем, что вирусы могут размножаться только в живых клетках, на самых ранних этапах развития вирусологии широко применяли культивирование вирусов в организме лабораторных животных, специально выращиваемых для проведения на них исследований.

Используют: 1)для обнаружения вируса в ПМ 2)первичного выделения вируса из ПМ 3)накопления вирусной массы 4)поддержания вируса в лаборатории в активном сост. 5)титровании вируса 6)в качестве тест-объекта в РН 6)получение гипериммунных сывороток. Используемые животные: белые мыши (бешенство, ящур), белые крысы (грипп свиней, б. Ауески), морские свинки (бешенство, ящур, чума плотоядных). Кролики (бешенство, миксомы кроликов).

Требования к лабораторным животным - животное должно быть чувствительным к данному вирусу; возраст его имеет большое значение для культивирования многих вирусов. Большинство вирусов лучше размножается в организме молодых и даже новорожденных животных; стандартная чувствительность достигается подбором животных определенного возраста и одинаковых по массе. По чувствительности наибольшей стандартностью обладают так называемые линейные животные, полученные в результате близкородственного скрещивания в течении ряда поколений; лабораторные животные должны быть здоровы. Животные, поступающие в виварий вирусологической лаборатории, должны быть привезены из благополучного по инфекционным заболеваниям хозяйства. Их содержат на карантине и ведут клиническое наблюдение. При наличии заболевания их уничтожают.

Животных размещают так, чтобы с одной стороны, было обеспечено функционирование всех систем организма в пределах физиологической нормы, с другой - исключено взаимное перезаражение и распространение инфекции за пределы вивария. Для животных разных видов применяют разные способы индивидуальной метки. Для крупных животных и кур используют металлические бирки со штампованным номером. При использовании в эксперименте небольшой группы животных и при непродолжительном сроке его можно выстригать шерсть знаками на спине, бедрах. Метка белых мышей, белых крыс может быть проведена ампутацией отдельных пальцев на передних или задних конечностях. Часто пользуются методом нанесения цветных пятен на непигментированную шерсть. Заражение лабораторных животных.

• 1. подкожно - спина.
• 2. Внутрикожно - пятка
• 3. Внутримышечно - бедро
• 4. Внутривенно - в хвост (предварительно растерев горячей водой и пережав)
• 5. Интранозально - капля в нос (предварительно дают слабый эфирный наркоз, что бы предупредить чихание)
• 6. Интероцеребрально - череп аккуратно просверливается иголочкой, не нажимать, капля уходит сама.

Все поверхности предварительно смазывают йодированным спиртом.

Препарирование лаб. животных (на примере белой мыши)

• - Кожа смазывается дезинфектором.
• - Производится разрез по linea alba.
• - Вскрытие грудины - берутся легкие и помещаются в пробирку №1
• - Вскрытие брюшной полости - берутся печень, селезенка, почка и помещаются в пробирку №2.
• - Производится вскрытие черепной коробки. Берется головной мозг, делаются срезы 4-х слоев, кусочки помещаются на фильтровальную бумагу и делаются отпечатки на стекло.

Публикации по теме:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Макарова М.Н., Рыбакова А.В., Гущин Я.А., Шедько В.В., Мужикян А.А., Макаров В.Г. Анатомо-физиологическая характеристика пищеварительного тракта у человека и лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 1. –С. 82-104.
2. Воронин С.Е., Макарова М.Н., Крышень К.Л., Алякринская А.А., Рыбакова А.В. Хорьки, как лабораторные животные // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 2. –С. 103-116.
3. Рыбакова А.В., Ковалева М.А., Калатанова А.В., Ванатиев Г.В., Макарова М.Н. Карликовые свиньи как объект доклинических исследований // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 3. –С. 168-176.
4. Воронин С.Е., Макарова М.Н., Крышень К.Л., Алякринская А.А., Рыбакова А.В. Хорьки как лабораторные животные // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 46-47.
5. Горячева М.А., Гущин Я.А., Ковалева М.А., Макарова М.Н. Возможность применения лидокаина гидрохлорида и калия хлорида для эвтаназии лабораторных кроликов // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 55-56.
6. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Надлежащее содержание и уход за карликовыми свиньями для доклинических иссдований // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 46-47.
7. Сусоев А.И., Авдеева О.И., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Опыт доклинического изучения оральнодиспергируемых лекарственных средств на хомяках // Тезисы докладов VII научно-практической конференции «Актуальные проблемы оценки безопасности лекарственных средств». Электронное приложение к журналу «Сеченовский вестник». -2016, № 2(24). –С. 34-35.
8. Калатанова А.В., Авдеева О.И., Макарова М.Н., Мужикян А.А., Шедько В.В., Ванатиев Г.В., Макаров В.Г., Карлина М.В., Пожарицкая О.Н. Использование защечных мешков хомяков при проведении доклинических исследований лекарственных средств, диспергируемых в полости рта// Фармация. -2016, №7. -С. 50-55.
9. Рыбакова А.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Использование кроликов в доклинических исследованиях// Международный вестник ветеринарии. -2016, № 4. –С. 102-106.
10. Гайдай Е.А., Макарова М.Н. Использование дегу как лабораторных животных// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 1. –С. 57-66.
11. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Зоотехнические характеристики содержания карликовых свиней в экспериментальных вивариях// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 1. –С. 66-74.
12. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Рыбакова А.В., Зозуля О.К. Питание лабораторных животных. Основные рационы. Сообщение 1. // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 91-105.
13. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Шекунова Е.В. Выбор вида животных для оценки нейротоксичности фармакологических веществ // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 106-113.
14. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование песчанок для биомедицинских исследований // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 117-124.
15. Бондарева Е.Д., Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Зоотехнические характеристики содержания морских свинок в экспериментальных вивариях // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 108-115.
16. Гущин Я.А., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная анатомия верхнего отдела желудочно-кишечного тракта экспериментальных животных и человека // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 116-129.
17. Макарова М.Н., Макаров В.Г. Питание лабораторных животных. Признаки дефицита и избытка белка, жира, углеводов и витаминов. Сообщение 2. // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 129-138.
18. Макарова М.Н., Рыбакова А.В., Кильдибеков К.Ю. Требования к освещенности в помещениях вивария и питомника лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 138-147.
19. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование хомяков в биомедицинских исследованиях// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 148-157.
20. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Рыбакова А.В. Питание лабораторных животных. Признаки дефицита и избытка минеральных соединений. Сообщение 3 // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 4. –С. 110-116.
21. Мужикян А.А., Заикин К.О., Гущин Я.А., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная морфология печени и желчного пузыря человека и лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 4. –С. 117-129.
22. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование морских свинок в биомедицинских исследованиях // Международный вестник ветеринарии. -2018, № 1. –С. 132-137.
23. Гущин Я.А., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная морфология нижнего отдела желудочно-кишечного тракта экспериментальных животных и человека // Международный вестник ветеринарии. -2018, № 1. – С. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Rationale for vaccination with trivalent or quadrivalent live attenuated influenza vaccines: Protective vaccine efficacy in the ferret model // PLOS ONE. – 2018. – P. 1-19.
25. Рыбакова А.В., Макарова М.Н., Кухаренко А.Е., Вичаре A.С., Рюффер Ф.-Р. Существующие требования и подходы к дозированию лекарственных средств лабораторным животным // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. – 2018, 8(4). – С. 207-217.